動物實驗給藥計算，實驗中給動物注射激素的量跟據什么來計算
發(fā)布時間：2022-09-16 11:57
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本文目錄一覽實驗中給動物注射激素的量跟據什么來計算2，實驗動物給藥劑量計算方法3，動物實驗常用動物及給藥方法有哪些4，概率題給一組雌雄等量的實驗動物服用一種藥然后對存活的動物分5，藥理學實驗動物用藥量計算6，給藥劑量臨床常用量動物等效面……
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1，實驗中給動物注射激素的量跟據什么來計算
按照正常和少量或不注射算就好了，
正常的量 機器都能測出來。
2，實驗動物給藥劑量計算方法
去百度文庫，查看完整內容> 內容來自用戶:peiruoshui 七、實驗動物用藥量的確定及計算方法 ?。ǎ﹦游锝o藥量的確定 在觀察一藥物的作用時，應該給動物在的劑量是實驗開始時應確定的一個重要問題劑量太小，作用不明顯，劑量太，又可能引起動物中毒致死，可以按下述方法確定劑量： 1．先用小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量，然后用小于中毒量的劑量，或取致死量的若干分之一應用劑量，一般可取1/10-1/5。 2．植物藥粗制劑的劑量多按生藥折算。 3．化學藥品可參考化學結構相似的已知藥物，特別是化學結構和作用都相似的藥物的劑量?！ ?．確定劑量后，如第一次實驗的作用不明顯，動物也沒有中毒的表現（體重下降、精神不振、活動減少或其他癥狀），可以加大劑量再次實驗。如出現中毒現象，作用也明顯，則應降低劑量再次實驗。在一般情況下，在適宜的劑量范圍內，藥物的作用常隨劑量的加大而增強。所以有條件時，最好同時用幾個劑量作實驗，以便迅速獲得關于藥物作用的較完整的資料。如實驗結果出現劑量與作用強度之間毫無規(guī)律時，則應慎重分析?！ ?．用大動物進行實驗時，開始的劑量可采用給鼠類劑量的十五分之一～二分之一，以后可根據動物的反應調整劑量。 6．確定動物給藥劑量時，要考慮給藥動物的年齡大小和 計算方法：兔每 例：試計算體重
3，動物實驗常用動物及給藥方法有哪些
常用動物有小鼠，大鼠，兔，蟾蜍等。主要給藥方法有喂食（將藥摻入水或食物中），靜脈注射，腹腔注射等。
4，概率題 給一組雌雄等量的實驗動物服用一種藥然后對存活的動物分
此藥對雌雄的致死作用不一致對雄性的致死作用概率是對雌性的致死作用概率的1/2即，對雄性的致死作用概率=1/3，對雌性的致死作用概率2/3你好！按提問者要求，測試了一個數據：設存活總數為524，其中雄性為176得到五個均為雄性的頻率為176/524*175/523*174/522*173/521*172/521=0.0041151/243=0.004115，兩數基本相等可見此藥對雄的致死作用大于對雌性的如果對你有幫助，望采納。原樣本中，動物雌雄等量，即連續(xù)抽樣5個均為雄性的概率為（0.5）^5=1/32用藥后，均為雄性的概率大大低于1/32，因此該藥物對雄性的致死作用更大。
5，藥理學實驗動物用藥量計算
靜注硫噴妥鈉劑量為100mg/kg，容量為1ml/kg，表示100mg|1ml.該藥0.5g=500mg,既是500|100=5ml, 兔體重2.2kg，容量為1ml/kg,表示,2.2*1=2.2ml所以應配成5ml。注射的藥量是2.2ml推薦一個免費教育教學資源下載網站-課件素材庫 <a target="_blank">http://www.kjxy8.cn/caidown/</a>，教案/論文/反思/說課/課件下載 /課本插圖/ 試題試卷/ 課件視頻教程/課件制作素材等資源約20多萬條，相關教育教學資源應有盡有，只有你想不到的，沒有你找不到的！
6，給藥劑量臨床常用量動物等效面積系數培養(yǎng)基內血清稀釋度中培養(yǎng)
有限稀釋法是一種常用的克隆方法。 將需要再克隆的細胞株自培養(yǎng)孔內吸出并作細胞計數，計出1mL的細胞數。 用HT培養(yǎng)液稀釋， 使細胞濃度為50～60個/mL，于96孔培養(yǎng)板中每孔加0.1mL(五六個細胞/孔)。接種2排，剩余細胞懸液用HT培養(yǎng)液作倍比稀釋，再接種2排，如此類推，直至使每孔含0.5～1個細胞。培養(yǎng)7～10d后，選擇單個克隆生長的陽性孔再一次進行克隆。一般需要如此重復3～5次，直至達100％陽性孔率時即可，以確?？贵w由單個克隆所產生。例如： 實驗細胞克隆化培養(yǎng)技術—有限稀釋法一、實驗目的： 1、掌握用有限稀釋法進行細胞克隆化培養(yǎng)技術； 2、學會細胞克隆形成的辯觀察技能； 3、配合抗體分泌細胞篩選技術，確定抗體分泌細胞。 二、實驗原理： 克隆化培養(yǎng)即單細胞培養(yǎng)技術，用有限稀釋法進行雜交瘤細胞克隆化培養(yǎng)，可以及時確定陽性雜交瘤細胞株，同時淘汰因發(fā)生染色體丟失或抗體的輕、重鏈基因分離而出現無抗體分泌陰性細胞株。 一般雜交瘤細胞需經過52—3次反復克隆后，才能達到100%細胞陽性率。 該辦法亦適用于一般細胞培養(yǎng)中的細胞純化、突變細胞株的選擇，識別和分離。是細胞株的常用方法。 三、實驗材料： 雜交瘤細胞、25毫升培養(yǎng)瓶、96孔細胞培養(yǎng)板（天津有機玻璃廠）、移液管（1毫升、5毫升、10毫升）、彎頭滴管、倒置顯微鏡、CO2培養(yǎng)箱、白細胞計數板、計數器、蓋玻片、防水筆、RPMI-1640、小牛血清、青鏈霉素、10毫升刻度離心管，00橡膠塞，飼養(yǎng)細胞（3-6×105/ml、見腹腔細胞的制備）。 四、實驗步驟： 1、分裝了每孔0.1毫升腹腔細胞的96孔細胞培養(yǎng)板（可提前24小時準備就緒，置CO2培養(yǎng)箱中備用）； 2、自細胞培養(yǎng)瓶中收集長勢良好的雜交瘤細胞（亦可自24孔培養(yǎng)板孔中收集），制成懸液。3、按白細胞計數方法準確計得細胞懸液的細胞數，一般在105/毫升左右。 4、取3支10毫升刻度離心管排列在超凈工作臺試管架上，先用無血清培養(yǎng)基將細胞稀釋至103/毫升，再用含15%小牛血清的完全培養(yǎng)基稀釋到101/毫升細胞，即每0.1毫升1個細胞。 5、每孔0.1毫升細胞懸液。 6、置37℃5%CO2培養(yǎng)箱，4天后取出觀察，并在板蓋上打上標記，做好記錄并統計結果。 7、繼續(xù)培養(yǎng)時，則在第4-5天更換1/2培養(yǎng)基，約第7-9天可以收獲培養(yǎng)液上清用于檢測抗體。并重復檢測1-2次。 8、選擇單克隆生長孔，生長良好，陽性強者，轉移到24孔板再做克隆經培養(yǎng)或擴大培養(yǎng)。 五、實驗結果： 實驗結果以總細胞孔（如96孔）中出現克隆孔統計出克隆百分率，并可進一步按單細胞孔、雙細胞孔、多細胞孔分別計算出百分率。 六、注意事項： 1、注意無菌操作，一旦發(fā)現污染（孔）必須及時處理； 2、計數細胞要求準確，稀釋量亦要準確，否則將造成一孔多細胞克隆或克隆百分離太低； 3、在計數克隆出現率之前，不宜更換培養(yǎng)液，也不宜強烈振動培養(yǎng)板； 4、做克隆化培養(yǎng)的小牛血清必須是優(yōu)質血清； 5、若做克隆抗體檢測時，特別要保護細胞的生長狀況，防止細胞生長不良甚至丟失。 七、說明： 哺乳動物細胞通過分離、稀釋接種，培養(yǎng)在適宜于單細胞生長的培養(yǎng)液中，形成細胞克隆。運用這項技術可以制作細胞成活曲線，即在接種相同數量細胞的培養(yǎng)瓶中，加入不同濃度的化學藥品，或照以不同劑量的射線，觀察其對細胞的聽見害程度。由此可以在哺乳類細胞中進行誘變試驗及分離突變細胞。
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