本文目錄一覽

• 1，實驗中給動物注射激素的量跟據(jù)什么來計算
• 2，實驗動物給藥劑量計算方法
• 3，動物實驗常用動物及給藥方法有哪些
• 4，概率題 給一組雌雄等量的實驗動物服用一種藥然后對存活的動物分
• 5，藥理學(xué)實驗動物用藥量計算
• 6，給藥劑量臨床常用量動物等效面積系數(shù)培養(yǎng)基內(nèi)血清稀釋度中培養(yǎng)

1，實驗中給動物注射激素的量跟據(jù)什么來計算

按照正常和少量或不注射算就好了， 正常的量 機(jī)器都能測出來。

2，實驗動物給藥劑量計算方法

去百度文庫，查看完整內(nèi)容> 內(nèi)容來自用戶:peiruoshui 　七、實驗動物用藥量的確定及計算方法　?。ǎ﹦游锝o藥量的確定　　在觀察一藥物的作用時，應(yīng)該給動物在的劑量是實驗開始時應(yīng)確定的一個重要問題劑量太小，作用不明顯，劑量太，又可能引起動物中毒致死，可以按下述方法確定劑量：　　1．先用小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量，然后用小于中毒量的劑量，或取致死量的若干分之一應(yīng)用劑量，一般可取1/10-1/5。　　2．植物藥粗制劑的劑量多按生藥折算?！　?．化學(xué)藥品可參考化學(xué)結(jié)構(gòu)相似的已知藥物，特別是化學(xué)結(jié)構(gòu)和作用都相似的藥物的劑量。　　4．確定劑量后，如第一次實驗的作用不明顯，動物也沒有中毒的表現(xiàn)（體重下降、精神不振、活動減少或其他癥狀），可以加大劑量再次實驗。如出現(xiàn)中毒現(xiàn)象，作用也明顯，則應(yīng)降低劑量再次實驗。在一般情況下，在適宜的劑量范圍內(nèi)，藥物的作用常隨劑量的加大而增強(qiáng)。所以有條件時，最好同時用幾個劑量作實驗，以便迅速獲得關(guān)于藥物作用的較完整的資料。如實驗結(jié)果出現(xiàn)劑量與作用強(qiáng)度之間毫無規(guī)律時，則應(yīng)慎重分析?！　?．用大動物進(jìn)行實驗時，開始的劑量可采用給鼠類劑量的十五分之一～二分之一，以后可根據(jù)動物的反應(yīng)調(diào)整劑量?！　?．確定動物給藥劑量時，要考慮給藥動物的年齡大小和　　計算方法：兔每　　例：試計算體重

3，動物實驗常用動物及給藥方法有哪些

常用動物有小鼠，大鼠，兔，蟾蜍等。主要給藥方法有喂食（將藥摻入水或食物中），靜脈注射，腹腔注射等。

靜脈給藥，灌胃給藥，皮下給藥

4，概率題 給一組雌雄等量的實驗動物服用一種藥然后對存活的動物分

此藥對雌雄的致死作用不一致對雄性的致死作用概率是對雌性的致死作用概率的1/2即，對雄性的致死作用概率=1/3，對雌性的致死作用概率2/3

你好！按提問者要求，測試了一個數(shù)據(jù)：設(shè)存活總數(shù)為524，其中雄性為176得到五個均為雄性的頻率為176/524*175/523*174/522*173/521*172/521=0.0041151/243=0.004115，兩數(shù)基本相等可見此藥對雄的致死作用大于對雌性的如果對你有幫助，望采納。

原樣本中，動物雌雄等量，即連續(xù)抽樣5個均為雄性的概率為（0.5）^5=1/32用藥后，均為雄性的概率大大低于1/32，因此該藥物對雄性的致死作用更大。

5，藥理學(xué)實驗動物用藥量計算

靜注硫噴妥鈉劑量為100mg/kg，容量為1ml/kg，表示100mg|1ml.該藥0.5g=500mg,既是500|100=5ml, 兔體重2.2kg，容量為1ml/kg,表示,2.2*1=2.2ml所以應(yīng)配成5ml。注射的藥量是2.2ml

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6，給藥劑量臨床常用量動物等效面積系數(shù)培養(yǎng)基內(nèi)血清稀釋度中培養(yǎng)

有限稀釋法是一種常用的克隆方法。 將需要再克隆的細(xì)胞株自培養(yǎng)孔內(nèi)吸出并作細(xì)胞計數(shù)，計出1mL的細(xì)胞數(shù)。 用HT培養(yǎng)液稀釋， 使細(xì)胞濃度為50～60個/mL，于96孔培養(yǎng)板中每孔加0.1mL(五六個細(xì)胞/孔)。接種2排，剩余細(xì)胞懸液用HT培養(yǎng)液作倍比稀釋，再接種2排，如此類推，直至使每孔含0.5～1個細(xì)胞。培養(yǎng)7～10d后，選擇單個克隆生長的陽性孔再一次進(jìn)行克隆。一般需要如此重復(fù)3～5次，直至達(dá)100％陽性孔率時即可，以確?？贵w由單個克隆所產(chǎn)生。例如： 實驗細(xì)胞克隆化培養(yǎng)技術(shù)—有限稀釋法一、實驗?zāi)康模?1、掌握用有限稀釋法進(jìn)行細(xì)胞克隆化培養(yǎng)技術(shù)； 2、學(xué)會細(xì)胞克隆形成的辯觀察技能； 3、配合抗體分泌細(xì)胞篩選技術(shù)，確定抗體分泌細(xì)胞。 二、實驗原理： 克隆化培養(yǎng)即單細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)，用有限稀釋法進(jìn)行雜交瘤細(xì)胞克隆化培養(yǎng)，可以及時確定陽性雜交瘤細(xì)胞株，同時淘汰因發(fā)生染色體丟失或抗體的輕、重鏈基因分離而出現(xiàn)無抗體分泌陰性細(xì)胞株。 一般雜交瘤細(xì)胞需經(jīng)過52—3次反復(fù)克隆后，才能達(dá)到100%細(xì)胞陽性率。 該辦法亦適用于一般細(xì)胞培養(yǎng)中的細(xì)胞純化、突變細(xì)胞株的選擇，識別和分離。是細(xì)胞株的常用方法。 三、實驗材料： 雜交瘤細(xì)胞、25毫升培養(yǎng)瓶、96孔細(xì)胞培養(yǎng)板（天津有機(jī)玻璃廠）、移液管（1毫升、5毫升、10毫升）、彎頭滴管、倒置顯微鏡、CO2培養(yǎng)箱、白細(xì)胞計數(shù)板、計數(shù)器、蓋玻片、防水筆、RPMI-1640、小牛血清、青鏈霉素、10毫升刻度離心管，00橡膠塞，飼養(yǎng)細(xì)胞（3-6×105/ml、見腹腔細(xì)胞的制備）。 四、實驗步驟： 1、分裝了每孔0.1毫升腹腔細(xì)胞的96孔細(xì)胞培養(yǎng)板（可提前24小時準(zhǔn)備就緒，置CO2培養(yǎng)箱中備用）； 2、自細(xì)胞培養(yǎng)瓶中收集長勢良好的雜交瘤細(xì)胞（亦可自24孔培養(yǎng)板孔中收集），制成懸液。3、按白細(xì)胞計數(shù)方法準(zhǔn)確計得細(xì)胞懸液的細(xì)胞數(shù)，一般在105/毫升左右。 4、取3支10毫升刻度離心管排列在超凈工作臺試管架上，先用無血清培養(yǎng)基將細(xì)胞稀釋至103/毫升，再用含15%小牛血清的完全培養(yǎng)基稀釋到101/毫升細(xì)胞，即每0.1毫升1個細(xì)胞。 5、每孔0.1毫升細(xì)胞懸液。 6、置37℃5%CO2培養(yǎng)箱，4天后取出觀察，并在板蓋上打上標(biāo)記，做好記錄并統(tǒng)計結(jié)果。 7、繼續(xù)培養(yǎng)時，則在第4-5天更換1/2培養(yǎng)基，約第7-9天可以收獲培養(yǎng)液上清用于檢測抗體。并重復(fù)檢測1-2次。 8、選擇單克隆生長孔，生長良好，陽性強(qiáng)者，轉(zhuǎn)移到24孔板再做克隆經(jīng)培養(yǎng)或擴(kuò)大培養(yǎng)。 五、實驗結(jié)果： 實驗結(jié)果以總細(xì)胞孔（如96孔）中出現(xiàn)克隆孔統(tǒng)計出克隆百分率，并可進(jìn)一步按單細(xì)胞孔、雙細(xì)胞孔、多細(xì)胞孔分別計算出百分率。 六、注意事項： 1、注意無菌操作，一旦發(fā)現(xiàn)污染（孔）必須及時處理； 2、計數(shù)細(xì)胞要求準(zhǔn)確，稀釋量亦要準(zhǔn)確，否則將造成一孔多細(xì)胞克隆或克隆百分離太低； 3、在計數(shù)克隆出現(xiàn)率之前，不宜更換培養(yǎng)液，也不宜強(qiáng)烈振動培養(yǎng)板； 4、做克隆化培養(yǎng)的小牛血清必須是優(yōu)質(zhì)血清； 5、若做克隆抗體檢測時，特別要保護(hù)細(xì)胞的生長狀況，防止細(xì)胞生長不良甚至丟失。 七、說明： 哺乳動物細(xì)胞通過分離、稀釋接種，培養(yǎng)在適宜于單細(xì)胞生長的培養(yǎng)液中，形成細(xì)胞克隆。運用這項技術(shù)可以制作細(xì)胞成活曲線，即在接種相同數(shù)量細(xì)胞的培養(yǎng)瓶中，加入不同濃度的化學(xué)藥品，或照以不同劑量的射線，觀察其對細(xì)胞的聽見害程度。由此可以在哺乳類細(xì)胞中進(jìn)行誘變試驗及分離突變細(xì)胞。

雖然我很聰明，但這么說真的難到我了

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